
蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads
货 号 | SB-PR001 | ||
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英 文 名 | Protein A/G Magnetic Beads | ||
规 格 | 1ml | ||
品 牌 | 圣尔生物share-bio | ||
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产品编号 | 名称 | 包装 | 品牌 | 目录价 | 促销价 | 货期 | 数量 | 购物车 |
SB-PR001 | 蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads | 1ml | 圣尔生物share-bio | ¥327.00 |
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SB-PR001 | 蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads | 100μl | 圣尔生物share-bio | ¥40.00 |
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SB-PR001 | 蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads | 5*1ml | 圣尔生物share-bio | ¥1308.00 |
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SB-PR001 | 蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads | 0.4ml | 圣尔生物share-bio | ¥228.00 |
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蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads 介绍
产品详情 | 【产品概述】 蛋白A/G磁珠是一种高性能亲和磁珠,包被经基因工程改造的、同时含有蛋白A及蛋白G的IgG结合结构域的重组融合蛋白,具有高容量、低非特异性结合等特点。与单独使用蛋白A或者蛋白G偶联的磁珠相比,蛋白A/G磁珠可从更广泛的物种和同种型范围中捕获抗体或抗原,可应用于细胞裂解物、细胞分泌液上清以及其他的免疫抗原的分离纯化等。 【微珠属性】 适用范围 IP、co-IP 磁珠浓度 10 mg/mL 磁珠直径 2 μm IgG结合量 0.5 mg/mL 适用抗体种属 广谱抗体种属 耐受高温 不耐高温 配基 蛋白A/G 【试剂准备】
注意:使用前在Lysis buffer、Wash buffer或IP&co-IP裂解、结合、清洗buffer(圣尔#SB-IP011)中添加适量的蛋白酶抑制剂。 【使用说明】 1.抗原样品制备(样本类型包括血清、悬浮细胞、贴壁细胞、大肠杆菌): 血清样本 若目标蛋白丰度较高,建议用Lysis buffer稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10-100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20°C长期保存)。 悬浮细胞样本 离心收集细胞(4°C,500×g,10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 μL的比例用1 × PBS洗涤2次;按每毫克细胞5 - 10 μL 的比例加入Lysis buffer,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10min;离心收集上清液(4°C,14000×g, 10 min),置于冰上备用(或置于-20°C长期保存)。 贴壁细胞样本 移去培养基,按每1.0×105 个细胞 150 μL 的比例用1×PBS 洗涤两次;用细胞刮棒刮脱细胞,收集至 1.5 mL EP管内,按每1×105个细胞20-30 μL的比例加入Lysis buffer,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上处理10 min;离心收集上清液(4°C,14000×g,10 min), 置于冰上备用(或置于-20°C长期保存)。 大肠杆菌样本 离心收集大肠杆菌(4°C,12000×g, 2 min),弃上清后称重,按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤2次;按每克(湿重)菌体5-10 mL的比例加入Lysis buffer,同时加入蛋白酶抑制剂(如终浓度为1 mM的PMSF),重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4°C,17000×g,10 min)。 2. 磁珠预处理: 将磁珠充分混悬,取25-50 μL磁珠每反应,400 μL Lysis buffer洗涤3次,弃上清。 3.抗体与磁珠结合 3.1 抗体稀释:结合缓冲液稀释抗体至终浓度为5-50 µg/mL,置于冰上备用。 3.2 抗体结合:将准备好的400 µL抗体加入准备好的磁珠中,置于翻转混合仪孵育(常温30 min,4°C 2 h),后进行磁性分离,收集上4 洗涤:弃去上清,用400 µL Wash buffer翻转洗涤磁珠,每次5 min。 5 洗脱蛋白:根据后续检测方案选择不同的洗脱方法 5.1 变性洗脱法(此方法洗脱的样品适用于PAGE、WB检测) 彻底吸去剩余的上清液,加入30-50 μL的2×SDS-PAGE loading buffer重悬沉淀物,稍微涡旋以混匀,随后稍稍微量离心让样品沉淀。将样品加热95°C,10分钟。分离微珠,将上清液转移到新管。上清液为样品,用于后续SDS-PAGE、WB分析。 5.2 非变性洗脱法(此方法保持原有的生物活性,可用于功能分析、质谱分析,也适于抗体纯化) 分离微珠,弃上清,向磁珠中加入50 μL蛋白洗脱缓冲液(酸性),在室温或低温不停吹打或震荡30-60秒。室温洗脱比4°C效率更高,建议酸性洗脱缓冲液在室温下预温。分离微珠,收集上清至新管,并立即加入5 μL的中和缓冲液,使洗脱产物pH调节至中性,样品用于后续分析。 【注意事项】 1 严禁冻结。 2 密闭保存,避免干燥,保持微珠浸于储液。 3 本品为悬液,使用前需充分混匀,微珠彻底悬浮后吸取,使用过程中避免高速离心。 4 蛋白样品收集后宜尽快完成纯化工作,并应始终放置在4℃或冰浴,以减缓蛋白降解或变性。为有效抑制蛋白降解,强烈建议在蛋白样品、Lysis buffer、Wash buffer中都添加适量的蛋白酶抑制剂。细胞裂解物可置于-80°C下长期保存。 5 裂解核蛋白,可在PIPA(强)裂解液中加入1mg/mL DNaseI、2.5 mM MgCl2、蛋白酶抑制剂和1 mM PMSF。 6 在结合反应过程中,微珠可能会出现聚团或呈片状,属于正常现象。 7 当目标蛋白分子量大小为50 kD或者25 kD时,建议更换轻链抗体/重链抗体,或使用纳米抗体磁珠,以尽量减少变性重链或轻链对SDS-PAGE和WB结果产生的干扰。 8 质控取样点1:样本充分裂解后,取数十微升样本,记作Input,即为反应前样本;质控取样点2:样本免疫沉淀孵育结束后,取上清样本10-50 μL,记作supernatant,即为上清样本。 9 缓冲液最大兼容性:1mM DTT(二硫苏糖醇);3 M 脈盐•HCI;8 M 尿素;2 M NaCl;2% NP-40;1% SDS;1% Triton X-100 【常见问题】 问题1 目标条带较弱/没有 可能原因:样品降解,需添加蛋白酶抑制剂,所有操作保持4℃以下冰上操作并防止冻融;抗体浓度太低,需增加抗体浓度,必要时设立浓度梯度,摸索最佳浓度;抗体亲合力太低,选用适合于IP/co-IP的相应抗体。 问题2 背景太高 可能原因:在无血清培养液中裂解细胞;在免疫沉淀前增加微珠预洗、免疫沉淀后增加漂洗次数和严谨度(高盐或去垢剂,如在第二次洗涤的步骤中增加NaCl浓度到500 mM);改用高严谨度裂解液;使用洁净的仪器或液体;不要接触WB的膜转移面。 问题3 杂带较多 可能原因:磁珠的非特异性结合,或者样本上样量过高、或者抗体浓度过高。建议实验前对微珠增加漂洗,实验过程中增加洗涤次数,使用合适的样品和抗体浓度。 本产品仅供科研使用。 |
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储存条件及期限 | 存放于4°C,微珠禁止冻结,有效期12个月;冰袋运输 |
蛋白A/G磁珠(IP/Co-IP)Protein A/G Magnetic Beads 说明书
For research use only. Not intended for human and animal therapeutic or diagnostic use.
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