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| 产品编号 | 名称 | 包装 | 品牌 | 目录价 | 促销价 | 货期 | 数量 | 购物车 |
| SB-YB1006 | 糖原PAS染色液 | 100mL | 圣尔生物share-bio | ¥450.00 |
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| SB-YB1006 | 糖原PAS染色液 | 500mL | 圣尔生物share-bio | ¥1950.00 |
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| SB-YB1006 | 糖原PAS染色液 | 50mL | 圣尔生物share-bio | ¥240.00 |
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糖原PAS染色液 介绍
| 产品详情 | 产品简介 糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等；过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色，由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。 糖原PAS染色液特点是采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。该试剂仅用于科研领域，不适用于临床诊断或其他用途。 自备试剂 1、10%福尔马林固定液 2、蒸馏水、系列乙醇、二甲苯或环保脱蜡透明液、中性树胶 使用方法 1、常规固定，常采用10%福尔马林固定液，常规脱水包埋。 2、石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。 3、自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。 4、入过碘酸溶液室温放置5～8min，一般不宜超过10min。 5、自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。 6、入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10～20min，自来水冲洗10min。 7、入苏木素染色液，染细胞核1～2min，酸性乙醇分化液分化2～5s。 8、自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。 9、逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶封固。 阴性对照(可选)： 1、取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。 2、(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。 3、(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。 技术资料 PAS反应阳性物质(糖原或多糖) 红色或紫红色 细胞核 蓝色 细胞质 深浅不一的红色 备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。 注意事项 1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。 2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。 3、过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气，使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。 4、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。 5、在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。 6、该染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色液(细胞专用)，糖原PAS染色液(真菌专用)，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。 |
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| 储存条件及期限 | 4℃避光保存12个月，常温运输。 |
糖原PAS染色液 说明书
For research use only. Not intended for human and animal therapeutic or diagnostic use.
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